IBENS - ENS

Remerciement

Fatima MELOUKI (microscopie photonique) — 2021-09-03T08:40:01Z

Le travail accompli au sein de la plateforme photonique de l'IBENS doit être reconnu. De ce fait, des remerciements sont de circonstances. Nous vous serions grés de citer la phrase ci dessous en cas d'utilisation d'images générées par nos microscopes ou de l'utilisation de nos logiciels d'analyse.

We gratefully acknowledge [platform staff name] and the IBENS imaging facility (IMACHEM-IBiSA), member of the national infrastructure France-BioImaging supported by the French National Research Agency (ANR-24-INBS-0005 FBI BIOGEN)", which received support from the "Fédération pour la Recherche sur le Cerveau - Rotary International France" (2025) , from the program « Investissements d'Avenir » ANR-10-LABX-54 MEMOLIFE and supported by the DIM C-BRAINS, funded by the Conseil Régional d'Ile-de-France

Microscope plein champs

Fatima MELOUKI (microscopie photonique) — 2021-07-29T10:59:45Z

Microscope plein champs Leica

Utilisations

Observation de tissus fixés et vivants
Acquisition 3D z-stack, time-lapse, spectral scan
Acquisition multi-position et mosaïque
Fluorophore observable : DAPI, GFP, CY5 et CY3

Spécifications

Microscope plein champs DMi6000
Platine motorisée XY
Platine Z motorisée
Logiciel : Inscopper
Détecteurs : caméra iris 15 (25 mm detecteur, taille de pixel 4.25 micrometres)
Objectifs : 10x, 40x, 63x, 100x
Lasers : lampe fluo LEICA EL6000

Galerie

Adrien Candat (Plateforme microscopie electronique) — 2021-03-15T13:25:15Z

Photorécepteurs (violet) de drosophile et ses partenaires post-synaptiques (vert).

Vésicules synaptiques (orange) d'une extrémité présynaptique dans l'hippocampe chez le rat.

Cil primaire (magenta) poussant sur le centriole père (jaune) du centrosome d'une cellule multiciliée du cerveau de souris ; convergence des microtubules (cyan) vers le centrosome.

Tarifs

Fatima MELOUKI (microscopie photonique) — 2021-02-12T14:08:15Z

Les samedis et dimanche ainsi que lors des heures creuses, les tarifs affichés ci-dessus sont réduis de 50%.
Les utilisateurs externe doivent prépayer les heures à effectuer en effectuant un bon de commande correspondant à un montant minimum de 300 euros.

Prestations

Adrien Candat (Plateforme microscopie electronique) — 2021-02-09T10:47:48Z

En fonction du type d'échantillon et des besoins scientifiques, la plateforme propose 3 types d'études :

Etude de particules

Lorsque les objets à observer correspondent à des particules de taille inférieure à 1 µm, il est possible de les observer directement au MET sans passer par les étapes d'inclusion en résine et de coupe. Il s'agit de générer un contraste qui permet de mettre en évidence les objets par rapport au film sur lequel ceux-ci sont déposés. C'est une méthode rapide qui nécessite quelques heures de préparation.

Etude morphologique de tissus ou cellules isolées

Cette étude privilégie la préservation de l'ultrastructure de l'échantillon pour pouvoir observer les cellules ou le tissu dans un état se rapprochant le plus possible de la réalité. La préparation des échantillons pour une étude morphologique peut être réalisée en deux semaines environ. A cela s'ajoute ensuite l'observation au MET.

Etude immunocytochimique de tissus ou cellules isolées

Cette étude privilégie la conservation de l'immunoréactivité des antigènes au détriment de la morphologie de l'échantillon. A l'aide d'anticorps couplés à l'or, il est possible de détecter et localiser des molécules d'intérêt au sein d'un tissu à une échelle nanométrique. La préparation des échantillons pour une étude immunocytochimique varie entre deux et trois semaines en fonction de l'approche envisagée. A cela s'ajoute ensuite l'observation au MET.

Tarifs

Adrien Candat (Plateforme microscopie electronique) — 2021-02-09T09:47:45Z

Formules tout compris

Pack Etude Morphologie
à partir de ………………………………………………………………………… 250 €
Pack Etude Immunocytochimie pré-enrobage
à partir de ………………………………………………………………………… 290 €
Pack Etude Immunocytochimie post-enrobage
à partir de ………………………………………………………………………… 340 €

Prestations au détail

Ultramicrotomie
1h en autonomie ……………………………………………………………….. 25 €
Coupes ultrafines
par grille …………………………………………………………………...………… 8 €
Coupes sériées
par grille ……………………………………………………………………………. 16 €
Coupes cryo (Tokuyasu)
pour 1h de coupe ………………………………………………………………. 40 €

Coloration de grille
par grille …………………………………………………………………………… 2,50 €
Coloration négative
par grille ……………………………………………………………………………… 4 €

Observation au MET
1h en autonomie ……………………………………………………………….. 30 €
1h avec assistance ………………………………………………………….….. 40 €
1h par l'ingénieur de la plateforme ………………………..………….. 70 €

Tous nos prix sont affichés Hors Taxes et concernent les équipes internes à l'IBENS et au CIRB. Pour les équipes extérieures, veuillez télécharger la plaquette (bientôt disponible).

Pour tout renseignement complémentaire, n'hésitez pas à nous contacter.

Equipements

Adrien Candat (Plateforme microscopie electronique) — 2021-02-09T09:47:14Z

La plateforme dispose d'appareils permettant la préparation des échantillons, la coupe classique et cryo (méthode Tokuyasu) ainsi que l'observation en microscopie électronique à transmission.

Préparation d'échantillons

Systèmes de cryo-substitution et d'inclusion à basse température :

Leica/Reichert AFS1

Leica AFS2

Machine de congélation haute pression :

Leica EM HPM100

Ultramicrotomie

Ultramicrotome :

Leica Ultracut UCT

Cryo-ultramicrotome :

Leica EM UC6 équipé d'une chambre pour cryo-ultramicrotomie Leica EM FC6

Microscopie électronique

Microscope Electronique à Transmission (MET) :

Philips/FEI TECNAI 12 (80-120 kV) équipé d'une caméra CCD Gatan Orius 1000 (4K) pilotée par le logiciel DigitalMicrograph

Publications

Adrien Candat (Plateforme microscopie electronique) — 2021-02-04T14:27:04Z

Dernières publications

Maynard S, Rostaing P, Schaefer N, Gemin O, Candat A, Dumoulin A, Villmann C, Triller A, Specht CG.
Identification of a stereotypic molecular arrangement of endogenous glycine receptors at spinal cord synapses.
Elife. 2021 Dec 8 ;10 : e74441. Online ahead of print.

Gemin O, Serna P, Zamith J, Assendorp N, Fossati M, Rostaing P, Triller A, Charrier C.
Unique properties of dually innervated dendritic spines in pyramidal neurons of the somatosensory cortex uncovered by 3D correlative light and electron microscopy.
PLoS Biol. 2021 Aug 24 ;19(8) : e3001375

Mercey O, Levine MS, LoMastro GM, Rostaing P, Brotslaw E, Gomez V, Kumar A, Spassky N, Mitchell BJ, Meunier A, Holland AJ.
Massive centriole production can occur in the absence of deuterosomes in multiciliated cells.
Nat Cell Biol. 2019 Dec ;21(12):1544-1552

Mercey O, Al Jord A, Rostaing P, Mahuzier A, Fortoul A, Boudjema AR, Faucourt M, Spassky N, Meunier A.
Dynamics of centriole amplification in centrosome-depleted brain multiciliated progenitors.
Sci Rep. 2019 Sep 10 ;9(1):13060

Al Jord A, Shihavuddin A, Servignat d'Aout R, Faucourt M, Genovesio A, Karaiskou A, Sobczak-Thépot J, Spassky N, Meunier A.
Calibrated mitotic oscillator drives motile ciliogenesis.
Science. 2017 Nov 10 ;358(6364):803-806

Tanaka A, De Martino A, Amato A, Montsant A, Mathieu B, Rostaing P, Tirichine L, Bowler C.
Ultrastructure and Membrane Traffic During Cell Division in the Marine Pennate Diatom Phaeodactylum tricornutum.
Protist. 2015 Nov ;166(5):506-21

Contacts

Adrien Candat (Plateforme microscopie electronique) — 2020-11-18T11:06:14Z

Adresse
46 rue d'Ulm 75005 Paris (Niveau 3. Porte 301)

Téléphone
01.44.32.(37.02) ; 01.44.32.(23.04)

Responsable de la plateforme
Adrien Candat (CNRS)

Responsables scientifiques
Alice Meunier (CNRS)
Iris Salecker (ENS)

Ancien Membre
Philippe Rostaing - Ancien responsable de la plateforme (INSERM)

LightSheet microscope

Fatima MELOUKI (microscopie photonique) — 2018-11-13T11:38:41Z

LightSheet

La plateforme met à disposition 1 microscope lightsheet :

Utilisation

Observation de tissus clarifié
Protocole : idisco & disco + (DBE) + cubic
Acquisition 3D z-stack
Acquisition en mosaïques

Spécifications

Ultramicroscope II
Détecteurs : sCMOS Andor Neo ( 2560 x 2160 pixels, Taille d'un pixel = 6.5 x 6.5 µm )
Objectif : 2x
Zoom possible : 1.26x - 12.6x
Lasers : 488nm, 561nm, 640nm, 785nm.